Jabalí - Sus scrofa Linnaeus, 1758

Para más información sobre cada apartado hacer click en:

 

Portada

 

Identificación

 

Estatus de conservación

 

Distribución

 

Hábitat

 

Ecología trófica

 

Biología de la reproducción

 

Interacciones entre especies

 

Comportamiento

 

Bibliografía

 

 

Key words: wild boar, interactions, predators, parasites, pathogens.

 

Interacciones con otras especies

En pastos subalpinos hozados por el jabalí aumenta el tamaño y contenido en nutrientes de los bulbos de plantas geófitas (Palacio et al., 2013)2. El hozado del jabalí en suelos de prados alpinos altera las comunidades de semillas y las homogeniza (Bueno et al., 2011)2. El uso de los pastos por el ganado y el hozado de los jabalíes afectan a las comunidades de lombrices (Bueno y Jiménez, 2014)3.

El jabalí actúa como depredador y como dispersante de semillas. La proporción de semillas depredadas y dispersadas varía entre especies en Doñana. En Juniperus phoenicea y Pyrus bourgaeana la proporción de semillas no dañadas en heces es inferior al 50%. En Pistacia lentiscus, Rubus ulmifolius y Corema album es superior al 75% yen Chamaerops humilis la proporción es del 100% (Perea et al., 2013)2. En prados de bosques cantábricos, el jabalí dispersa sobre todo semillas de Rubus ulmifolius/fruticosus (Peredo et al., 2013)2. En zonas degradadas de Sierra Nevada el jabalí es un eficaz dispersante de semillas de Rosa sp. y Crataegus monogyna (Matías et al., 2010)2. El jabalí influye en las tasas de reclutamiento y distribución espacial de las encinas (Gómez y Hódar, 2008)2.

El jabalí es un dispersante legítimo de Pyrus bourgaeana (Fedriani y Delibes, 2009)2. Los jabalíes tienden a dispersar las semillas de Pyrus bourgaeana en las proximidades de los árboles adultos, lo que podría contribuir al mantenimiento y ampliación de los grupos de árboles (Fedriani et al., 2010)2.

Hay interacciones entre jabalíes y ganado vacuno y porcino en puntos de agua, lo que puede facilitar la transmisión de Mycobacterium bovis (Kukielka et al., 2013)2.

 

Depredadores

En cuanto al papel del jabalí como presa, destaca la depredación del lobo, especialmente sobre los más jóvenes (Salvador y Abad, 1987; Cuesta et al., 1991; Llaneza et al., 1996). Durante los primeros meses de vida, durante su etapa de rayón, el jabalí puede ser víctima del ataque de águilas, zorros o linces.

Se han encontrado juveniles de jabalí en la dieta del águila real (Aquila chrysaetos) en el sur de España (Bautista et al., 2016)3.

 

Parásitos y enfermedades

El jabalí tanto por su tamaño como por su dieta, cuenta con numerosos parásitos y enfermedades.

Se han citado en la Península Ibérica los siguientes:

Nematodos: Ascaris suum, Ascarops strongylina, Capillaria garfiai, Choerostrongylus pudendotectus, Globocephalus urosubulatus, Gongylonema pulchrum, Metastrongylus apri, Metastrongylus pudendotectus, Metastrongylus pulmonalis, Metastrongylus salmi, Oesophagostomum dentatum, Physocephalus sexalatus, Simondsia paradoxa, Trichinella britovi, Trichinella spiralis, Trichuris suis (Serrano et al., 1998; Santinho Barata y Afonso-Roque, 1989)2; Cordero del Campillo et al., 1994)2; Ferrer y Castella, 1996; Pérez-Martín et al., 2000; De la Muela et al., 2001; Fernández de Mera et al. 2003; Bruno de Sousa et al., 20042; Fernández-Llario et al., 2005a; García-González et al., 2013)2

Es conocido, y peligroso para la salud humana, que los jabalíes pueden ser portadores de un nematodo perteneciente al género Trichinella, que permanece en estado larvario en su musculatura y que si es consumido por el hombre puede ocasionarle la muerte. Estos jabalíes infectados no muestran ningún tipo de sintomatología que haga sospechar el tipo de gusano que transportan (Pérez-Martín et al., 2000). Se ha observado infección por Trichinella spiralis y Trichinella britovi en un jabalí cazado en Cáceres (Rodríguez et al., 2008)2. La prevalencia media de Trichinella sp. en jabalíes de la provincia de Ciudad Real durante el periodo de 1998-2010 fue del 0,2% (n= 95.070) (Boadella et al., 2012)2. Se ha estimado en una muestra de Montes de Toledo (n= 2.216) recogida durante 2007-2008 una prevalencia de Trichinella spiralis del 0,77% (García-Sánchez et al., 2009)2. Se ha detectado Trichinella sp. en el 0,2% de una muestra (n= 1399) de jabalíes de España (Zamora et al., 2015)3.

Los nematodos Oesophagostomum dentatum, Ascaris suum, y Trichuris suis se detectaron solo en animales importados. Los autóctonos estaban más parasitizados por Ascarops strongylina que los importados. No se observaron diferencias en prevalencia ni en intensidad en las especies Capillaria garfiai, Globocephalus urosubulatus, Metastrongylus sp., Physocephalus sexalatus y Simondsia paradoxa (Fernández de Mera et al. 2003).

Acantócefalos: Macracanthorhynchus hirundinaceus (De la Muela et al., 2001; Fernández de Mera et al. 2003).

Cestodos: Cysticercus tenuicollis, Echinococcus granulosus, Taenia hydatigena cysticercus (De la Muela et al., 2001; Bruno de Sousa et al., 20042; Martín-Hernando et al., 2008)2

Digenea: Brachylaemus erinacei y Fasciola hepatica (Cordero del Campillo et al., 1994; Bruno de Sousa et al., 2004)2. Se ha detectado infección por el trematodo Fasciola hepatica en jabalíes de Galicia (Mezo et al., 2013)2.

Ácaros: Dermacentor marginatus, Dermacentor niveus, Dermacentor reticulatus, Hyalomma anatolicum, Hyalomma anatolicum excavatum, Hyalomma lusitanicum, Hyalomma marginatum, Hyalomma marginatum rufipes, Ixodes ricinus, Ixodes canisuga, Rhipicephalus bursa, Rhipicephalus pusillus Rhipicephalus sanguineus, Rhipicephalus turanicus (Cordero del Campillo et al., 1994)2; Ruiz-Fons et al., 20061).

Se han identificado en garrapatas de jabalíes (Ixodes ricinus, Dermacentor marginatus, Rhipicephalus bursa y Hyalomma m. marginatum) los siguientes patógenos: piroplásmidos, Anaplasma sp., Ehrlichia sp. y Rickettsia sp. (de la Fuente et al., 2004).

Anopluros: Haematopinus apri y Haematopinus suis (Cordero del Campillo et al., 1994)2.

Protista: Theileria capreoli (Pereira et al., 2016)3.

Se ha citado en la Península Ibérica el protozoo Isospora suis (Cordero del Campillo et al., 1994)2. Otros protozoos son los que ocasionan la enfermedad llamada toxoplasmosis (Coelho et al., 2014; Calero-Bernal et al., 2015)3.  Análisis de suero de 507 jabalíes procedentes de 5 regiones del norte y de 7 regiones del sur de España revelaron la presencia de anticuerpos de Toxoplasma gondii en el 38,4%. La prevalencia fue mayor en las poblaciones meridionales y más alta en poblaciones de mayor densidad (Gauss et al., 2005). En esa misma línea de resultados, en varias zonas del oeste peninsular en donde se puede considerar que la densidad de los jabalíes es media (entre 3 y 10 individuos por kilómetro cuadrado), se han analizado 209 jabalíes, registrándose un 22% de jabalíes con niveles altos de anticuerpos (Fernández-Llario et al., 2005b). También se ha encontrado en jabalíes de Portugal (Lopes et al., 2011)2. Se ha descrito transmisión de la toxoplasmosis de la madre a las crías (Calero-Bernal et al., 2013)2. Se ha detectado en el suroeste ibérico una prevalencia del 23,8% (n= 2881) de anticuerpos frente a Toxoplasma gondii y un 72,2% (n= 910) frente a Sarcocystis miescheriana y Sarcocystis suihominis (Calero-Bernal et al., 2016)3.

Se han detectado anticuerpos de Neospora caninum, coccidio que produce neosporosis bovina, en el 0,3% de 298 jabalíes examinados (Almería et al., 2007).1

Se ha comprobado la presencia de Giardia sp., Cryptosporidium scrofarum, Cryptosporidium suis y Cryptosporidium parvum en jabalíes de Galicia (Castro-Hermida et al., 2011; García-Presedo et al., 2013)2. Se ha registrado infección por Sarcocystis miescheriana en el 73,8% de los jabalíes (n= 103) examinados del noreste de Portugal (Coelho et al., 2015)3.

Bacterias: Anaplasma platys (Pereira et al., 2016)3, Borrelia afzelii (Faria et al., 2015)3, Brucella suis (Risco et al., 2014)3, Campylobacter sp. (Carbonero et al., 2014)3, Erysipelotrix rhusiopathiae (Cano-Manuel et al., 2014)3, Leptospira pomona (Cano-Manuel et al., 2014)3, Mycobacterium chelonae (García-Jiménez et al., 2015)3,  Nocardia sp. (Matos et al., 2015)3, Streptococcus suis (Risco et al., 2015)3.

La tuberculosis bovina, causada por Mycobacterium bovis, es una enfermedad crónica en el centro-sur peninsular (Vicente et al., 2006; Vidal et al., 20061; Hermoso de Mendoza et al., 2005; García-Sánchez et al., 20071; Gortázar et al., 20082; Vieira-Pinto et al., 20112; Boadella et al., 20112; García-Bocanegra et al., 20122; Mentaberre et al., 20142). Un análisis efectuado en jabalíes de Doñana ha puesto de manifiesto la existencia de diferentes tipos de micobacterias (Gortázar et al., 2011)2. La prevalencia ha aumentado en el jabalí del 50% al 63% desde el año 2000 al año 2012. El vallado de las fincas se asocia con un mayor riesgo de TB (Vicente et al., 2013)2. La tuberculosis bovina está presente en jabalíes de las regiones atlánticas de la Península Ibérica, aunque con una prevalencia muy baja (2,6%) (Muñoz-Mendoza et al., 2013)2. Se ha detectado amyloidosis asociada con tuberculosis en un individuo del Parque nacional de Cabañeros (Segales et al., 2005). Se ha observado asociación entre infección por tuberculosis bovina y por Circovirus porcino tipo 2 (Risco et al., 2013)2. Se ha encontrado infección por Mycobacterium caprae en jabalíes ibéricos (Rodríguez et al., 2011; García-Jiménez et al., 2013)2. El jabalí podría ser un importante reservorio de Mycobacterium avium y de Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis en Portugal (Matos et al., 2016)3.

La infección por tuberculosis bovina puede ser erradicada en poblaciones de jabalí si el 80% de las crías son vacunadas a lo largo de 25 años. Periodos de vacunación de 5 años reducen la prevalencia de la enfermedad pero no consiguen erradicarla (Anderson et al., 2013)2.

En Portugal, la probabilidad de infección en jabalí por Mycobacterium bovis estuvo relacionada en el periodo 2011-2014 con la densidad de ganado y de ciervo (Madeira et al., 2017)3. Se ha registrado una prevalencia del 21,4% de Mycobacterium bovis en muestras de jabalí recogidas en Portugal entre 2009 y 2013 (Matos et al., 2016)3.

Se han detectado anticuerpos frente a Mycobacterium avium en el 23,9% de una muestra (n= 109) de jabalíes de Portugal (Matos et al., 2015)3.

Se han encontrado mayores niveles de vitamina D3 en individuos que tienen tuberculosis localizada en comparación con aquellos que tienen tuberculosis generalizada, lo que sugiere que la concentración de vitamina D3 se correlaciona negativamente con la severidad de la enfermedad (Risco et al., 2016)3.

Se ha citado un caso de infección por Pasteurella multocida (Risco et al., 2013)2. Se ha diagnosticado un caso de infección mortal por Haemophilus parasuis (Cuesta Gerveno et al., 2013)2.

La prevalencia de Brucella suis en jabalíes ibéricos tiene un valor medio del 33% y varía entre el 25% y el 46% según regiones, siendo más elevada en el centro-sur peninsular (Muñoz et al., 2010)2. Se han detectado anticuerpos de Brucella sp. en jabalíes de Cataluña (Closa-Sebastia et al., 2010)2. Brucella suis produce cambios en la expresión de los genes del bazo en jabalí (Galindo et al., 2010)2.

Se ha identificado la presencia de Coxiella burnetii en el 4,3% de los jabalíes del País Vasco examinados (Astobiza et al., 2011)2. Se han detectado anticuerpos frente a Leptospira sp. en jabalíes de Asturias (Espí et al., 2010)2.

Se han detectado anticuerpos frente a Chlamydiaceae y Chlamydophila abortus en jabalíes ibéricos (Salinas et al., 2009)2.  Se ha encontrado un jabalí con lesiones oculares relacionadas con Chlamydia suis (Risco et al., 2013)2.

Rickettsia slovaca produce linfadenopatía y es transmitido por garrapatas. En el nordeste ibérico la garrapata Dermacentor marginatus es su vector más importante, siendo el jabalí su hospedador principal (Ortuño et al., 2007).1  

Se ha encontrado Salmonella enterica y Campylobacter coli en jabalíes de zonas urbanas de Barcelona (Navarro-González et al., 2013)2. La prevalencia de Salmonella en jabalíes es mayor en poblaciones que conviven con ganado doméstico (Navarro-González et al., 2012)2. Se ha detectado Salmonella sp. en jabalíes de Portugal, aunque con prevalencia muy baja (Dias et al., 2015)3.

Se ha detectado el filogrupo B2 incluyendo el linaje ST131 de Escherichia coli en jabalíes (Alonso et al., 2017)3. Se han detectado en Los jabalíes de Portugal bacterias (Escherichia coli) resistentes a antibióticos (Dias et al., 2015)3. En una muestra de jabalíes (n= 117) del Parque Natural Ports de Tortosa i Beseit, el 3,4% eran portadores de Escherichia coli O157:H7 (Navarro-González et al., 2015)3.

Se ha detectado Staphylococcus aureus MRSA CC398 en jabalíes del norte de Portugal (Sousa et al., 2017)3.

Se han detectado anticuerpos frente a Leptospira sp. en el 65,4% de una muestra (n= 101) de jabalíes del norte de Portugal (Vale-Goncalves et al., 2015)3.

Análisis de suero de jabalíes (n = 78) de Sierra Morena y Montes de Toledo detectaron anticuerpos indicadores de Leptospira interrogans var. pomona (12%), Erysipelothrix rhusiopathiae (5%), Salmonella del serogrupo B (4%) y Salmonella del serogrupo C (3%) (Vicente et al., 2002). Se han observado elevadas prevalencias de anticuerpos frente a Erysipelothrix rhusiopathiae (Boadella et al., 2012)2.

Se ha detectado en jabalíes de Cataluña infección por Mycoplasma hyopneumoniae, Erysipelothrix rhusiopathiae, Salmonella spp. y Toxoplasma gondii (Closa-Sebastia et al., 2011)2.

En una muestra de jabalíes (n= 505) obtenidos en el País Vasco entre 2001 y 2012, se detectaron anticuerpos frente a Yersinia enterocolitica y Yersinia pseudotuberculosis  en el 52,5% de los ejemplares (Arrausi-Subiza et al., 2016)3.

Virus: Virus del síndrome reproductivo y respiratorio porcino, virus de la gripe porcina, circovirus porcino, parvovirus porcino, herpesvirus de la enfermedad de Aujeszky (Cano-Manuel et al., 2014)3.

Destacan los virus pertenecientes al grupo de los Herpesvirus y que ocasionan la enfermedad de Aujeszky (Cano-Manuel et al., 20141).  En Extremadura el análisis de 228 jabalíes ha dado como resultado que el 40% de los machos y el 35,16% de las hembras tenían una elevada tasa de anticuerpos frente a este virus (Fernández-Llario et al., 2003). Se he detectado una seroprevalencia del virus de la enfermedad de Aujeszky del 49,6% en una muestra de jabalíes (n= 1659) recogidos durante el periodo 2000-2010 (Boadella et al., 2012)2.

La enfermedad de Aujeszky se encuentra en jabalíes ibéricos (Ruiz-Fons et al., 2008)2.  Análisis de suero de jabalíes (n = 78) de Sierra Morena y Montes de Toledo detectaron anticuerpos indicadores de la enfermedad de Aujeszky (PRV, 36%), parvovirus porcino (PPV, 10%) y serotipo H1N1 del virus influenza porcino (Vicente et al., 2002). Se han observado elevadas prevalencias de anticuerpos frente a virus de la hepatitis E (Boadella et al., 2012)2. Se ha detectado en jabalíes de Cataluña infección por el virus de la enfermedad de la frontera y se detectaron anticuerpos frente al virus de la fiebre porcina, virus del síndrome respiratorio y reproductivo, virus de la enfermedad de Aujeszky, gripe porcina A, circovirus porcino tipo 2, parvovirus porcino (Closa-Sebastia et al., 2011)2.

Se han detectado anticuerpos de virus de la enfermedad del Nilo occidental y de flavivirus en jabalíes del centro peninsular y de Doñana (Gutierréz-Guzmán et al., 2012)2. Se ha detectado anticuerpos frente a flavivirus en el 4% de crías de jabalí muestreadas (n= 742) (Boadella et al., 2012)2.

Se ha detectado el virus de la hepatitis E en jabalíes de Portugal (Mesquita et al., 2016)3. Se ha detectado el virus de la hepatitis E en el 10,12% de una muestra de jabalí (n= 158) de Toledo y Ciudad Real obtenidos durante el periodo 2003-2010 (Kukielka et al., 2016)3.

Se ha encontrado el parvovirus 4 en el 24% de una muestra de jabalí de Portugal (Miranda et al., 2016)3.

 

Referencias

Almería, S., Vidal, D., Ferrer, D., Pabón, M., Fernández de Mera, M. I. G., Ruiz-Fons, F., Alzaga, V., Marco, I., Calvete, C., Lavin, S., Gortázar, C., López-Gatius, F., Dubey, J. P. (2007). Seroprevalence of Neospora caninum in non-carnivorous wildlife from Spain. Veterinary Parasitology, 143 (1): 21-28.

Alonso, C. A., González-Barrio, D., Ruiz-Fons, F., Ruiz-Ripa, L., Torres, C. (2017). High frequency of B2 phylogroup among non-clonally related fecal Escherichia coli isolates from wild boars, including the lineage ST131. FEMS Microbiology Ecology, 93 (3): fix016.

Anderson, L. G., Gortazar, C., Vicente, J., Hutchings, M. R., White, P. C. L. (2013). Modelling the effectiveness of vaccination in controlling bovine tuberculosis in wild boar. Wildlife Research, 40 (5): 367-376.

Arrausi-Subiza, M., Gerrikagoitia, X., Alvarez, V., Ibabe, J. C., Barral, M. (2016). Prevalence of Yersinia enterocolitica and Yersinia pseudotuberculosis in wild boars in the Basque Country, northern Spain. Acta Veterinaria Scandinavica, 58: 4.

Astobiza, I., Barral, M., Ruiz-Fons, F., Barandika, J. F., Gerrikagoitia, X., Hurtado, A., García-Pérez, A. L. (2011). Molecular investigation of the occurrence of Coxiella burnetii in wildlife and ticks in an endemic area. Veterinary Microbiology, 147 (1-2): 190-194.

Bautista, J., Moleón, M., Gil, J. M. (2016). Dieta del águila real en el sur de España. Quercus, 364: 17-23.

Boadella, M., Acevedo, P., Vicente, J., Mentaberre, G., Balseiro, A., Arnal, M. C., Martínez, D., García-Bocanegra, I., Casal, C., Alvarez, J., Oleaga, A., Lavin, S., Muñoz, M., Saez-Llorente, J. L., de la Fuente, J., Gortazar, C. (2011). Spatio-Temporal Trends of Iberian Wild Boar Contact with Mycobacterium tuberculosis Complex Detected by ELISA. Ecohealth, 8 (4): 478-484.

Boadella, M., Barasona, J. A., Pozio, E., Montoro, V., Vicente, J., Gortázar, C., Acevedo, P. (2012). Spatio-temporal trends and risk factors for Trichinella species infection in wild boar (Sus scrofa) populations of central Spain: A long-term study. International Journal for Parasitology, 42 (8): 739-745.

Boadella, M., Díez-Delgado, I., Gutiérrez-Guzmán, A. V., Hofle, U., Gortázar, C. (2012). Do Wild Ungulates Allow Improved Monitoring of Flavivirus Circulation in Spain? Vector-Borne and Zoonotic Diseases, 12 (6): 490-495.

Boadella, M., Gortázar, C., Vicente, J., Ruiz-Fons, F. (2012). Wild boar: an increasing concern for Aujeszky's disease control in pigs? BMC Veterinary Research, 8: 7.

Boadella, M., Ruiz-Fons, J. F., Vicente, J., Martin, M., Segales, J., Gortazar, C. (2012). Seroprevalence Evolution of Selected Pathogens in Iberian Wild Boar. Transboundary and Emerging Diseases, 59 (5): 395-404.

Bruno de Sousa, C., Madeira de Carvalho, L. M., Fazendeiro, I., Castro Rego, F., Afonso-Roque, M. M. (2004). Contribution for the knowledge of wild boar (Sus scrofa L.) helmintic fauna in Tapada Nacional de Mafra, an enclosured hunting area. Research and Reviews in Parasitology, 64 (1-4): 3-7.

Bueno, C. G., Jiménez, J. J. (2014). Livestock grazing activities and wild boar rooting affect alpine earthworm communities in the Central Pyrenees (Spain). Applied Soil Ecology, 83. 71-78.

Bueno, C. G., Reine, R., Alados, C. L., Gómez-García, D. (2011). Effects of large wild boar disturbances on alpine soil seed Banks. Basic and Applied Ecology, 12 (2): 125-133.

Calero-Bernal, R., Gómez-Gordo, L., Saugar, J. M., Frontera, E., Pérez-Martin, J. E., Reina, D., Serrano, F. J., Fuentes, I. (2013). Congenital Toxoplasmosis in Wild Boar (Sus scrofa) and Identification of the Toxoplasma gondii Types Involved. Journal of Wildlife Diseases, 49 (4): 1019-1023.

Calero-Bernal, R., Pérez-Martín, J. E., Reina, D., Serrano, F. J., Frontera, E., Fuentes, I., Dubey, J. P. (2016). Detection of Zoonotic Protozoa Toxoplasma gondii and Sarcocystis suihominis in Wild Boars from Spain. Zoonoses and Public Health, 63 (5): 346-350.

Calero-Bernal, R., Saugar, J. M., Frontera, E., Pérez-Martín, J. E., Habela, M. A., Serrano, F. J., Reina, D., Fuentes, I. (2015). Prevalence and Genotype Identification of Toxoplasma gondii in Wild Animals from Southwestern Spain. Journal of Wildlife Diseases, 51 (1): 233-238.

Cano-Manuel, F. J., López-Olvera, J., Fandos, P., Soriguer, R. C., Pérez, J. M., Granados, J. E. (2014). Long-term monitoring of 10 selected pathogens in wild boar (Sus scrofa) in Sierra Nevada National Park, southern Spain. Veterinary Microbiology, 174 (1-2): 148-154.

Carbonero, A., Paniagua, J., Torralbo, A., Arenas-Montes, A., Borge, C., García-Bocanegra, I. (2014). Campylobacter infection in wild artiodactyl species from southern Spain: Occurrence, risk factors and antimicrobial susceptibility. Comparative Immunology Microbiology and Infectious Diseases, 37 (2): 115-121.

Castro-Hermida, J. A., García-Presedo, I., González-Warleta, M., Mezo, M. (2011). Prevalence of Cryptosporidium and Giardia in roe deer (Capreolus capreolus) and wild boars (Sus scrofa) in Galicia (NW, Spain). Veterinary Parasitology, 179 (1-3): 216-219.

Coelho, C., Gomes, J., Inacio, J., Amaro, A., Mesquita, J. R., Pires, I., Lopes, A. P., Vieira-Pinto, M. (2015). Unraveling Sarcocystis miescheriana and Sarcocystis suihominis infections in wild boar. Veterinary Parasitology, 212 (3-4): 100-104.

Closa-Sebastia, F., Casas-Díaz, E., Cuenca, R., Lavin, S., Mentaberre, G., Marco, I. (2010). Brucella species antibodies and isolation in wild boar in north-east Spain. Veterinary Record, 167 (21): 826-828.

Closa-Sebastia, F., Casas-Díaz, E., Cuenca, R., Lavin, S., Mentaberre, G., Marco, I. (2011). Antibodies to selected pathogens in wild boar (Sus scrofa) from Catalonia (NE Spain). European Journal of Wildlife Research, 57 (4): 977-981.

Coelho, C., Vieira-Pinto, M., Faria, A. S., Vale-Goncalves, H., Veloso, O., Paiva-Cardoso, M. N., Mesquita, J. R., Lopes, A. P. (2014). Serological evidence of Toxoplasma gondii in hunted wild boar from Portugal. Veterinary Parasitology, 202 (3-4): 310-312.

Cordero del Campillo, M., Castañón Ordóñez, L., Reguera Feo, A. (1994). Índice- catálogo de zooparásitos ibéricos. Segunda edición. Secretariado de publicaciones, Universidad de León.

Cuesta, L., Bárcena, F., Palacios, F., Reig, S. (1991). The trophic ecology of the Iberian wolf (Canis lupus signatus Cabrera, 1907). A new analysis of stomach's data. Mammalia, 55 (2): 239-254.

Cuesta Gerveno, J. M., Risco Pérez, D., Goncalves Blanco, P., García Jiménez, W. L., Gil Molino, M., Fernández-Llario, P., Hermoso de Mendoza Salcedo, J., Gómez Gordo, L. J. (2013). Fatal infection due to Haemophilus parasuis in a young wild boar (Sus scrofa). Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 25 (2): 297-300.

De la Fuente, J., Naranjo, V., Ruiz-Fons, F. Vicente, J., Estrada-Pena, A., Almazán, C., Kocan, K. M., Martín, M. P., Gortázar, C. (2004). Prevalence of tick-borne pathogens in ixodid ticks (Acari: Ixodidae) collected from European wild boar (Sus scrofa) and Iberian red deer (Cervus elaphus hispanicus) in central Spain. European Journal of Wildlife Research, 50 (4): 187-196.

De la Muela, N., Hernández de Luján, S., Ferre, I. (2001). Helminths of wild boar in Spain. Journal of Wildlife Diseases, 37 (4): 840-843.

Dias, D., Torres, R. T., Kronvall, G., Fonseca, C., Mendo, S., Caetano, T. (2015). Assessment of antibiotic resistance of Escherichia coli isolates and screening of Salmonella spp. in wild ungulates from Portugal. Research in Microbiology, 166 (7): 584-593.

Espi, A., Prieto, J. M., Alzaga, V. (2010). Leptospiral antibodies in Iberian red deer (Cervus elaphus hispanicus), fallow deer (Dama dama) and European wild boar (Sus scrofa) in Asturias, Northern Spain. Veterinary Journal, 183 (2): 226-227.

Faria, A. S., Paiva-Cardoso, M. N., Nunes, M., Carreira, T., Vale-Goncalves, H. M., Veloso, O., Coelho, C., Cabral, J. A., Vieira-Pinto, M., Vieira, M. L. (2015). First Detection of Borrelia burgdorferi sensu lato DNA in Serum of the Wild Boar (Sus scrofa) in Northern Portugal by Nested-PCR. Ecohealth, 12 (1): 183-187.

Fedriani, J. M., Delibes, M. (2009). Seed dispersal in the Iberian pear, Pyrus bourgaeana: A role for infrequent mutualists. Ecoscience, 16 (3): 311-321.

Fedriani, J. M., Wiegand, T., Delibes, M. (2010). Spatial pattern of adult trees and the mammal-generated seed rain in the Iberian pear. Ecography, 33 (3): 545-555.

Fernández-Llario, P., Parra, A., Casas, E., Cerrato, R., Hermoso de Mendoza, J. (2003). ¿Existe relación entre el estado reproductivo, sexo y la seroprevalencia de la enfermedad de Aujesky? Resultados preliminares para una población de jabalíes (Sus scrofa) del suroeste peninsular. VI Jornadas de la Sociedad Española para la Conservación y Estudio de los Mamíferos, Ciudad Real.

Fernández-Llario, P., Moller, A. P., María Alcaide, M., Martínez Pérez, R., Jurgen Robledo, J., Pérez Martín, E. (2005a). Jabalíes y nematodos pulmonares: un caso de la influencia ambiental y sexual en las incidencias parasitarias en mamíferos. VII Jornadas de la Sociedad Española para la Conservación y Estudio de los Mamíferos, Valencia.

Fernández-Llario, P., Martínez-Pérez, R., Robledo, J., Bravo, M., Pérez Martín, E. (2005b). Jabalíes y toxoplasmosis. ¿Un nuevo problema para la salud humana y animal? Parte I. Presencia del parásito en los jabalíes y factores que condicionan la incidencia. Caza Mayor, 78: 33-38.

Fernández de Mera, I. G., Gortázar, C., Vicente, J., Hofle, U., Fierro, Y. (2003). Wild boar helminths: Risks in animal translocations. Veterinary Parasitology, 115 (4): 335-341.

Ferrer, D., Castella, J. (1996). Capillaria garfiai Gallego et Mas-Coma, 1975 (Nematoda: Trichuridae) in a wild boar in Catalonia, Spain. Research and Reviews in Parasitology, 56 (1): 65-67.

Galindo, R. C., Muñoz, P. M., de Miguel, M. J., Marin, C. M., Labairu, J., Revilla, M., Blasco, J. M., Gortázar, C., de la Fuente, J. (2010). Gene expression changes in spleens of the wildlife reservoir species, Eurasian wild boar (Sus scrofa), naturally infected with Brucella suis biovar 2. Journal of Genetics and Genomics, 37 (11): 725-736.

García-Bocanegra, I., Pérez de Val, B., Arenas-Montes, A., Paniagua, J., Boadella, M., Gortazar, C., Arenas, A. (2012). Seroprevalence and Risk Factors Associated to Mycobacterium bovis in Wild Artiodactyl Species from Southern Spain, 2006-2010. Plos One, 7 (4): e34908.

García-González, A. M., Pérez-Martín, J. E., Gamito-Santos, J. A., Calero-Bernal, R., Alcaide Alonso, M., Frontera Carrión, E. M. (2013). Epidemiologic Study of Lung Parasites (Metastrongylus spp.) in Wild Boar (Sus scrofa) in Southwestern Spain. Journal of Wildlife Diseases, 49 (1): 157-162.

García-Jiménez, W. L., Benítez-Medina, J. M., Fernández-Llario, P., Abecia, J. A., García-Sánchez, A., Martínez, R., Risco, D., Ortiz-Pelaez, A., Salguero, F. J., Smith, N. H., Gómez, L., Hermoso de Mendoza, J. (2013). Comparative Pathology of the Natural infections by Mycobacterium bovis and by Mycobacterium caprae in Wild Boar (Sus scrofa). Transboundary and Emerging Diseases, 60 (2): 102-109.

García-Jiménez, W. L., Benítez-Medina, J. M., Martínez, R., Carranza, J., Cerrato, R., García-Sánchez, A., Risco, D., Moreno, J. C., Sequeda, M., Gómez, L., Fernández-Llario, P., Hermoso de Mendoza, J. (2015). Non-tuberculous Mycobacteria in Wild Boar (Sus scrofa) from Southern Spain: Epidemiological, Clinical and Diagnostic Concerns. Transboundary and Emerging Diseases, 62 (1): 72-80.

García-Presedo, I., Pedraza-Díaz, S., González-Warleta, M., Mezo, M., Gómez-Bautista, M., Ortega-Mora, L. M., Castro-Hermida, J. A. (2013). Presence of Cryptosporidium scrofarum, C. suis and C. parvum subtypes IIaA16G2R1 and IIaA13G1R1 in Eurasian wild boars (Sus scrofa). Veterinary Parasitology, 196 (3-4): 497-502.

García-Sánchez, A., Gómez, L., Fernández-Llario, P., Parra, A., Hermoso de Mendoza, J. (2007). Tuberculous meningoencephalitis in a wild boar. Journal of Wildlife Diseases, 43 (4): 780-783.

García-Sánchez, R. N., Nogal-Ruiz, J. J., Manzano-Lorenzo, R., Arroyo Díaz, J. M., Pérez López, G., Sánchez Ruano, F. J., Casas, A. R., Crespo Bascón, C., Bolas-Fernández, F., Martínez-Fernández, A. R. (2009). Trichinellosis survey in the wild boar from the Toledo mountains in south-western Spain (2007-2008): molecular characterization of Trichinella isolates by ISSR-PCR. Journal of Helminthology, 83 (2): 117-120.

Gauss, C. B., Dubey, J. P., Vidal, D., Ruiz, F., Vicente, J., Marco, I., Lavin, S., Gortazar, C., Almeria, S. (2005). Seroprevalence of Toxoplasma gondii in wild pigs (Sus scrofa) from Spain. Vet. Parasitol., 15, 151-156.

Gómez, J. M., Hódar, J. A. (2008). Wild boars (Sus scrofa) affect the recruitment rate and spatial distribution of holm oak (Quercus ilex). Forest Ecology and Management, 256 (6): 1384-1389.

Gortázar, C., Torres, M. J., Acevedo, P., Aznar, J., Negro, J. J., de la Fuente, J., Vicente, J. (2011). Fine-tuning the space, time, and host distribution of mycobacteria in wildlife. BMC Microbiology, 11: 27.

Gortázar, C., Torres, M. J., Vicente, J., Acevedo, P., Reglero, M., de la Fuente, J., Negro, J. J., Aznar-Martín, J. (2008). Bovine Tuberculosis in Doñana Biosphere Reserve: The Role of Wild Ungulates as Disease Reservoirs in the Last Iberian Lynx Strongholds. Plos One, 3 (7): e2776.

Gortázar, C., Vicente, J., Fierro, Y., Leon, L., Cubero, M. J., González, M. (2002). Natural Aujeszky's disease in a Spanish wild boar population. Annals of the New York Academy of Sciences, 969: 210-212.

Gutiérrez-Guzmán, A. V., Vicente, J., Sobrino, R., Pérez-Ramírez, E., Llorente, F., Hofle, U. (2012). Antibodies to West Nile virus and related flaviviruses in wild boar, red foxes and other mesomammals from Spain. Veterinary Microbiology, 159 (3-4): 291-297.

Hermoso de Mendoza, J., Parra, A., Tato, A., Alonso, J.M., Rey, J.M., Pena, J., Garcia-Sanchez, A., Larrasa, J., Teixido, J., Manzano, G., Cerrato, R., Pereira, G., Fernandez-Llario, P., Hermoso de Mendoza, M. (2005). Bovine tuberculosis in wild boar (Sus scrofa), red deer (Cervus elaphus) and cattle (Bos taurus) in a Mediterranean ecosystem (1992-2004). Prev. Vet. Med., 74 (2-3): 239-247.

Kukielka, E., Barasona, J. A., Cowie, C. E., Drewe, J. A., Gortazar, C., Cotarelo, I., Vicente, J. (2013). Spatial and temporal interactions between livestock and wildlife in South Central Spain assessed by camera traps. Preventive Veterinary Medicine, 112 (3-4): 213-221.

Kukielka, D., Rodríguez-Prieto, V., Vicente, J., Sánchez-Vizcaíno, J. M. (2016). Constant Hepatitis E Virus (HEV) Circulation in Wild Boar and Red Deer in Spain: An Increasing Concern Source of HEV Zoonotic Transmission. Transboundary and Emerging Diseases, 63 (5): E360-E368.

León Vizcaíno, L. (1991). Principales enfermedades contagiosas en especies cinegéticas. Manual de ordenación y gestión cinegética, 1: 105-134. Instituación ferial de Badajoz.

Llaneza, L., Fernández, A., Nores, C. (1996). Dieta del lobo en dos zonas de Asturias (España) que difieren en carga ganadera. Doñana, Acta Vertebrata, 23: 201-213.

Lopes, A. P., Sargo, R., Rodrigues, M., Cardoso, L. (2011). High seroprevalence of antibodies to Toxoplasma gondii in wild animals from Portugal. Parasitology Research, 108 (5): 1163-1169.

Madeira, S., Manteigas, A., Ribeiro, R., Otte, J., Pina Fonseca, A., Caetano, P., Abernethy, D., Boinas, F. (2017). Factors that Influence Mycobacterium bovis Infection in RedDeer and Wild Boar in an Epidemiological Risk Area forTuberculosis of Game Species in Portugal. Transboundary and Emerging Diseases, 64 (3): 793-804.

Martín-Hernando, M. P., González, L. M., Ruiz-Fons, F., Gárate, T., Gortazar, C. (2008). Massive presence of Echinococcus granulosus (Cestoda, Taeniidae) cysts in a wild boar (Sus scrofa) from Spain. Parasitology Research, 103 (3): 705-707.

Matías, L., Zamora, R., Mendoza, I., Hódar, J. A. (2010). Seed Dispersal Patterns by Large Frugivorous Mammals in a Degraded Mosaic Landscape. Restoration Ecology, 18 (5): 619-627.

Matos, A. C., Andrade, S., Figueira, L., Matos, M., Fires, M. A., Coelho, A. C., Pinto, M. L. (2016). Mesenteric lymph node granulomatous lesions in naturally infected wild boar (Sus scrofa) in Portugal-Histological, immunohistochemical and molecular aspects. Veterinary Immunology and Immunopathology, 173: 21-26.

Matos, A. C., Dias, A. P., Morais, M., Matos, M., Pinto, M. L., Coelho, A. C., Figueira, L. (2015). Granulomatous lymphadenitis caused by Nocardia species in hunted wild boar (Sus scrofa) in Portugal. Veterinary Record, 177 (4): 103-U51.

Matos, A. C., Figueira, L., Martins, M. H., Pinto, M. L., Matos, M., Coelho, A. C. (2016). New Insights into Mycobacterium bovis Prevalence in Wild Mammals in Portugal. Transboundary and Emerging Diseases, 63 (5): E313-E322.

Matos, A. C., Figueira, L., Matos, M., Pinto, M. L., Coelho, A. C. (2015). Seroprevalence of Mycobacterium avium Complex in Wild Mammals in the Iberian Peninsula. Journal of the Hellenic Veterinary Medical Society, 66 (3): 177-184.

Mentaberre, G., Romero, B., de Juan, L., Navarro-González, N., Velarde, R., Mateos, A., Marco, I., Olive-Boix, X., Domínguez, L., Lavin, S., Serrano, E. (2014). Long-Term Assessment of Wild Boar Harvesting and Cattle Removal for Bovine Tuberculosis Control in Free Ranging Populations. Plos One, 9 (2): e88824.

Mesquita, J. R., Oliveira, R. M. S., Coelho, C., Vieira-Pinto, M., Nascimento, M. S. J. (2016). Hepatitis E Virus in Sylvatic and Captive Wild Boar from Portugal. Transboundary and Emerging Diseases, 63 (5): 574-578.  

Mezo, M., González-Warleta, M., Castro-Hermida, J. A., Manga-González, M. Y., Peixoto, R., Mas-Coma, S., Valero, M. A. (2013). The wild boar (Sus scrofa Linnaeus, 1758) as secondary reservoir of Fasciola hepatica in Galicia (NW Spain). Veterinary Parasitology, 198 (3-4): 274-283.

Miranda, C., Coelho, C., Vieira-Pinto, M., Thompson, G. (2016). Porcine hokovirus in wild boar in Portugal. Archives of Virology, 161 (4): 981-984.

Muñoz, P. M., Boadella, M., Arnal, M. C., de Miguel, M. J., Revilla, M., Martínez, D., Vicente, J., Acevedo, P., Oleaga, A., Ruiz-Fons, F., Marín, C. M., Prieto, J. M., de la Fuente, J., Barral, M., Barberán, M., Fernández de Luco, D., Blasco, J. M., Gortázar, C. (2010). Spatial distribution and risk factors of Brucellosis in Iberian wild ungulates. BMC Infectious Diseases, 10: 46.

Muñoz-Mendoza, M., Marreros, N., Boadella, M., Gortazar, C., Menéndez, S., de Juan, L., Bezos, J., Romero, B., Copano, M. F., Amado, J., Saez, J. L., Mourelo, J., Balseiro, A. (2013). Wild boar tuberculosis in Iberian Atlantic Spain: a different picture from Mediterranean habitats. BMC Veterinary Research, 9: 176.

Navarro-González, N., Porrero, M. C., Mentaberre, G., Serrano, E., Mateos, A., Cabal, A., Domínguez, L., Lavin, S. (2015). Escherichia coli O157:H7 in wild boars (Sus scrofa) and Iberian ibex (Capra pyrenaica) sharing pastures with free-ranging livestock in a natural environment in Spain. Veterinary Quarterly, 35 (2): 102-106.

Navarro-González, N., Casas-Díaz, E., Porrero, C. M., Mateos, A., Domínguez, L., Lavin, S., Serrano, E. (2013). Food-borne zoonotic pathogens and antimicrobial resistance of indicator bacteria in urban wild boars in Barcelona, Spain. Veterinary Microbiology, 167 (3-4): 686-689.

Navarro-González, N., Fernández-Llario, P., Pérez-Martín, J. E., Mentaberre, G., López-Martín, J. M., Lavin, S., Serrano, E. (2013). Supplemental feeding drives endoparasite infection in wild boar in Western Spain. Veterinary Parasitology, 196 (1-2): 114-123.

Navarro-González, N., Mentaberre, G., Porrero, C. M., Serrano, E., Mateos, A., López-Martín, J. M., Lavin, S., Domínguez, L. (2012). Effect of Cattle on Salmonella Carriage, Diversity and Antimicrobial Resistance in Free-Ranging Wild Boar (Sus scrofa) in Northeastern Spain. Plos One, 7 (12): e51614.

Ortuño, A., Quesada, M., López-Claessens, S., Castella, J., Sanfeliu, I., Antón, E., Segura-Porta, F. (2007). The role of wild boar (Sus scrofa) in the eco-epidemiology of R. slovaca in northeastern Spain. Vector-Borne and Zoonotic Diseases, 7 (1): 59-64.

Palacio, S., Bueno, C. G., Azorín, J., Maestro, M., Gómez-García, D. (2013). Wild-boar disturbance increases nutrient and c stores of geophytes in subalpine grasslands. American Journal of Botany, 100 (9): 1790-1799.

Perea, R., Delibes, M., Polko, M., Suarez-Esteban, A., Fedriani, J. M. (2013). Context-dependent fruitfrugivore interactions: partner identities and spatio-temporal variations. Oikos, 122 (6): 943-951.

Peredo, A., Martínez, D., Rodríguez-Pérez, J., García, D. (2013). Mammalian seed dispersal in Cantabrian woodland pastures: Network structure and response to forest loss. Basic and Applied Ecology, 14 (5): 378-386.

Pereira, A., Parreira, R., Nunes, M., Casadinho, A., Vieira, M. L., Campino, L., Maia, C. (2016). Molecular detection of tick-borne bacteria and protozoa in cervids and wild boars from Portugal. Parasites & Vectors, 9: 251.

Pérez-Martín, J. E., Serrano, F. J., Reina, D., Mora, J. A., Navarrete, I. (2000). Sylvatic trichinellosis in southwestern Spain. Journal of Wildlife Diseases, 36: 531-534.

Risco, D., Fernández-Llario, P., Cuesta, J. M., García-Jiménez, W. L., Gil, M., Goncalves, P., Martínez, R., Gómez, L., García, A., Rey, J., Hermoso de Mendoza, M., Hermoso de Mendoza, J. (2013). Fatal outbreak of systemic pasteurellosis in a wild boar (Sus scrofa) population from southwest Spain. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 25 (6): 791-794.

Risco, D., Fernández-Llario, P., Cuesta, J. M., García-Jiménez, W. L., Goncalves, P., Martínez, R., Garcia, A., Rosales, R., Gómez, L., Hermoso de Mendoza, J. (2015). Fatal case of Streptococcus suis infection in a young wild boar (Sus scrofa) from southwestern Spain. Journal of Zoo and Wildlife Medicine, 46 (2): 370-373.

Risco, D., Fernández-Llario, P., García-Jiménez, W. L., Goncalves, P., Cuesta, J. M., Martínez, R., Sanz, C., Sequeda, M., Gómez, L., Carranza, J., Hermoso de Mendoza, J. (2013). Influence of Porcine Circovirus Type 2 Infections on Bovine Tuberculosis in Wild Boar Populations. Transboundary and Emerging Diseases, 60: 121-127.

Risco, D., García, A., Fernández-Llario, P., García, W. L., Benítez, J. M., Goncalves, P., Cuesta, J. M., Gómez, L., Rey, J., Hermoso de Mendoza, J. (2013). Ocular lesions associated with Chlamydia suis in a wild boar piglet (Sus scrofa) from a semi-free range population in Spain. Journal of Zoo and Wildlife Medicine, 44 (1): 159-162.

Risco, D., García, A., Serrano, E., Fernández-Llario, P., Benítez, J. M., Martínez, R., García, W. L., Hermoso de Mendoza, J. (2014). High-Density Dependence But Low Impact on Selected Reproduction Parameters of Brucella suis Biovar 2 in Wild Boar Hunting Estates from South-Western Spain. Transboundary and Emerging Diseases, 61 (6): 555-562.

Risco, D., Salguero, F. J., Cerrato, R., Gutiérrez-Merino, J., Lanham-New, S., Barquero-Pérez, O., Hermoso de Mendoza, J., Fernández-Llario, P. (2016). Association between vitamin D supplementation and severity of tuberculosis in wild boar and red deer. Research in Veterinary Science, 108: 116-119.

Rodríguez, S., Bezos, J., Romero, B., de Juan, L., Alvarez, J., castellanos, E., Moya, N., Lozano, F., Javed, M. T., Sáez-Llorente, J. L., Liébana, E., Mateos, A., Domínguez, L., Aranaz, A. (2011). Mycobacterium caprae Infection in Livestock and Wildlife, Spain. Emerging Infectious Diseases, 17 (3): 532-535.

Rodríguez, E., Olmedo, J., Ubeira, F., Blanco, C., Garate, T. (2008). Mixed infection, Trichinella spiralis and Trichinella britovi, in a wild boar hunted in the Province of Cáceres (Spain). Experimental Parasitology, 119 (3): 430-432.

Ruiz-Fons, F., Fernández de Mera, I. G., Acevedo, P., Hoefle, U., Vicente, J., de la Fuente , J., Gortázar, C. (2006). Ixodid ticks parasitizing Iberian red deer (Cervus elaphus hispanicus) and European wild boar (Sus scrofa) from Spain: geographical and temporal distribution. Veterinary Parasitology, 140 (1-2): 133-142.

Ruiz-Fons, F., Vicente, J., Vidal, D., Hofle, U., Villanua, D., Gauss, C., Segales, J., Almería, S., Montoso, V., Gortazar, C. 2006. Seroprevalence of six reproductive pathogens in European wild boars (Sus scrofa) form Spain: The effects on wild boar female reproductive performance. Theriogenology, 65: 731-743.

Ruiz-Fons, F., Vidal, D., Vicente, J., Acevedo, P., Fernández de Mera, I. G., Montoro, V., Gortázar, C. (2008). Epidemiological risk factors of Aujeszky's disease in wild boars (Sus scrofa) and domestic pigs in Spain. European Journal of Wildlife Research, 54 (4): 549-555.

Salinas, J., Caro, M. R., Vicente, J., Cuello, F., Reyes-García, A. R., Buendia, A. J., Rodolakis, A., Gortázar, C. (2009). High prevalence of antibodies against Chlamydiaceae and Chlamydophila abortus in wild ungulates using two "in house" blocking-ELISA tests. Veterinary Microbiology, 135 (1-2): 46-53.

Salvador, A., Abad, P.L. (1987). Food habits of a wolf population (Canis lupus) in León province, Spain. Mammalia, 51: 45-52.

Santinho Barata, M. C., Afonso-Roque, M. M. (1989). As especies do genero Metastrongylus Molin, 1861 (Nematoda, Trichostrongyloidea) parasitas do javali (Sus scrofa castilianus Thomas, 1912) em Portugal. Garcia De Orta Serie de Zoologia, 16 (1-2): 45-50.

Serrano, F. J., Pérez-Martín, E., Reina, D., Nieto, C. G., Navarrete, I., Murrell, K. D. (1998). Intensity of natural Trichinella spiralis and T. britovi infections in animal hosts of Extremadura (Spain) and its repercussion for diagnosis by direct methods. Research and Reviews in Parasitology, 58 (2): 117-120.

Segales, J., Vicente, J., Luján, L., Toussaint, M. J. M., Gruys, E., Gortázar, C. (2005). Systemic AA-amyloidosis in a European wild boar (Sus scrofa) suffering from generalized tuberculosis. Journal of Veterinary Medicine, Series A, 52 (3): 135-137.

Sousa, M., Silva, N., Manageiro, V., Ramos, S., Coelhoi, A., Goncalves, D., Canica, M., Torres, C., Igrejas, G., Poeta, P. (2017). First report on MRSA CC398 recovered from wild boars in the north of Portugal. Are we facing a problem? Science of the Total Environment, 596: 26-31.

Vale-Goncalves, H. M., Cabral, J. A., Faria, M. C., Nunes-Pereira, M., Faria, A. S., Veloso, O., Vieira, M. L., Paiva-Cardoso, M. N. (2015). Prevalence of Leptospira antibodies in wild boars (Sus scrofa) from Northern Portugal: risk factor analysis. Epidemiology and Infection, 143 (10): 2126-2130.

Vicente, J., Barasona, J. A., Acevedo, P., Ruiz-Fons, J. F., Boadella, M., Díez-Delgado, I., Beltrán-Beck, B., González-Barrio, D., Queiros, J., Montoro, V., de la Fuente, J., Gortazar, C. (2013). Temporal Trend of Tuberculosis in Wild Ungulates from Mediterranean Spain. Transboundary and Emerging Diseases, 60: 92-103.

Vicente, J., Hofle, U., Garrido, J. M., Fernández de Mera, I.G., Juste, R., Barral, M., Gortazar, C. (2006). Wild boar and red deer display high prevalences of Tuberculosis-like lesions in Spain. Vet. Res., 37: 107-119.

Vicente, J., León-Vizcaíno, L., Gortázar, C., Cubero, M. J., González, M., Martín-Atance, P. (2002). Antibodies to selected viral and bacterial pathogens in European wild boars from southcentral Spain. Journal of Wildlife Diseases, 38 (3): 649-652.

Vidal, D., Naranjo, V., Mateo, R., GortÁzar, C., de la Fuente , J. (2006). Analysis of serum biochemical parameters in relation to Mycobacterium bovis infection of European wild boars (Sus scrofa) in Spain. European Journal of Wildlife Research, 52 (4): 301-304.

Vieira-Pinto, M., Alberto, J., Aranha, J., Serejo, J., Canto, A., Cunha, M. V., Botelho, A. (2011). Combined evaluation of bovine tuberculosis in wild boar (Sus scrofa) and red deer (Cervus elaphus) from Central-East Portugal. European Journal of Wildlife Research, 57 (6): 1189-1201.

Zamora, M. J., Álvarez, M., Olmedo, J., Blanco, M. C., Pozio, E. (2015). Trichinella pseudospiralis in the Iberian peninsula. Veterinary Parasitology, 210 (3-4): 255-259.  

 

Pedro Fernández-Llario
Departamento de Biología y Geología
Instituto de Enseñanza Secundaria “Santa Lucía del Trampal”
10160 Alcuéscar, Cáceres

Red de Grupos de Recursos Faunísticos, Facultad de Veterinaria
Universidad de Extremadura, E-10003 Cáceres

Fecha de publicación: 14-03-2006

Otras contribuciones: 1. Alfredo Salvador. 29-05-2008; 2. Alfredo Salvador. 30-04-2014; 3. Alfredo Salvador. 26-07-2017

Fernández-Llario, P. (2017). Jabalí – Sus scrofa. En: Enciclopedia Virtual de los Vertebrados Españoles. Salvador, A., Barja, I. (Eds.). Museo Nacional de Ciencias Naturales, Madrid. http://www.vertebradosibericos.org/