|
|
|
|
|
|
Para más información sobre cada apartado hacer click en:
|
Key words: Iberian water frog, interactions, predators, parasites.
Interacciones entre especies Su amplia área de distribución, así como sus escasos requerimientos ecológicos, convierte a esta especie en simpátrica respecto a la mayor parte de las restantes especies de anfibios presentes en su área de distribución. Sin embargo, esta simpatría es estricta en el caso de las especies cuyas distribuciones no se restringen a altitudes elevadas, ya que éste es un factor limitante en su área de distribución (Llorente y Arano, 1997; Llorente et al., 2002). Dados los hábitos eminentemente acuáticos de la especie, ésta comparte hábitat con estadios embionarios y larvarios de numerosas especies de anfibios más terrestres, así como con los individuos adultos de las mismas cuando acuden a los puntos de agua a reproducirse. Ha sido citada su presencia en compañía de Bufo bufo, Epidalea calamita, Alytes dickhilleni, Alytes obstetricans, Discoglossus jeanneae, Discoglossus jeanneae, Salamandra salamandra, Pelodytes punctatus, Pelobates cultripes (Egea-Serrano et al¸ 2005c,d; datos propios inéditos), Discoglossus pictus (Barrio, 1991). En las Islas Canarias las puestas son realizadas conjuntamente con Hyla meridionalis, no existiendo aparentemente competencia entre ellas (Báez y Luis, 1994). En León coincide con Hyla arborea durante la puesta (Salvador y Carrascal, 1990). En Mallorca ha sido relacionada la presencia de Pelophylax perezi con la regresión de las poblaciones de Alytes muletensis (Moore et al., 2004) al competir por el espacio y depredar sobre ella (Román, 2002). Es capaz de hibridar con otras especies europeas pertenecientes al género Pelophylax (P. ridibundus, P. lessonae) (Hotz et al., 1994; Arano y Llorente, 1995; Crochet et al., 1995; Pagano et al., 2001). A partir del cruce entre las especies parentales Pelophylax perezi y Pelophylax ridibundus, se ha identificado la forma híbrida Pelophylax kl. grafi (Crochet et al., 1995). Ésta presenta un alto éxito de fertilización y viabilidad embrionaria y larvaria, así como mayor fecundidad y velocidad de crecimiento que Pelophylax perezi (Hotz et al., 1994). Respecto a los estadios larvarios, al ser la reproducción de la especie tardía, éstos comparten sus hábitats con pocas especies de anfibios (Díaz-Paniagua, 1992). Sin embargo, la larga duración de la estación larvaria (Díaz-Paniagua, 1986), así como su capacidad de pasar el invierno en el agua (Egea-Serrano et al., 2005b; Richter-Boix et al., 2006b), hacen que las larvas de Pelophylax perezi puedan encontrarse junto a larvas de otras muchas especies. Así, se ha registrado su presenciajunto a Salamandra salamandra, Pleurodeles waltl, Triturus pygmaeus, Triturus boscai, Alytes dickhilleni, Pelodytes punctatus, Bufo bufo, Epidalea calamita, Pelobates cultripes, Alytes obstetricans e Hyla meridionalis (Báez y Luis, 1994; Egea-Serrano et al., 2005 c, 2006; Malkmus, 2005; datos propios inéditos). Como consecuencia de su capacidad competitiva, ha sido descrita la producción de efectos adversos en larvas de diferentes anfibios por las de Pelophylax perezi (Richter-Boix et al., 2007b).
Estrategias antidepredatorias Los individuos adultos de la especie cuando son molestados escapan de los depredadores saltando al agua. Los individuos de gran talla tienden a permitir que los depredadores se aproximen a distancias significativamente menores cuando el cuerpo de agua presenta abundante vegetación acuática o de ribera. La influencia de la vegetación sobre la respuesta frente a los depredadores no se observa en los ejemplares de menor tamaño, los cuales confían en su capacidad mimética y permiten que el depredador se aproxime más. Respecto a la distancia de salto, con independencia de la talla, si el cuerpo de agua presenta mayor cobertura de vegetación acuática, el salto es menor. El comportamiento después del salto depende del tamaño corporal: los ejemplares mayores responden en función de las condiciones del medio, no mostrando una tendencia significativa a permanecer en la superficie o a bucear, mientras que los pequeños tienden a permanecer en la superficie. En cualquier caso, las ranas son más proclives a bucear cuando no existe vegetación, ni acuática ni de ribera, exhibiendo los ejemplares buceadores distancias de acercamiento del depredador y de salto mayores que las que no bucean (Martín et al., 2005). Junto a las características del microhábitat y el tamaño corporal, el comportamiento de huida de la especie está condicionado por la existencia de grupos. Así, aunque la respuesta del primer individuo que huye no difiere significativamente respecto a individuos aislados, el salto del resto del grupo se inicia antes que las esperadas en individuos solitarios (Martín et al., 2006). En el caso de que no puedan escapar, los individuos de Pelophylax perezi desarrollan una reacción refleja arqueando la columna vertebral (Martínez-Solano y García-París, 2004; Díaz-Paniagua et al., 2005), o bien traban con sus dedos las patas posteriores, de forma que aumentan su anchura e impiden así ser ingeridas por depredadores que se ven obligados a consumirlas enteras, como el caso de las culebras de agua (Martínez-Solano y García-París, 2004). Cuando son capturados por serpientes (Natrix maura) emiten fuertes y finos chillidos (Díaz-Paniagua et al., 2005). Por otra parte, ha sido descrito el comportamiento de huida de los estadios larvarios frente a galápagos en condiciones de mesocosmos. En estos estudios se observó que las larvas frustraban los ataques de los depredadores realizando carreras cortas y rápidas en direcciones diferentes a la línea de persecución. Junto a esta defensa etológica, las larvas se revelaron como no palatables para el depredador Mauremys leprosa (Gómez-Mestre y Keller, 2003). Adicionalmente, la exposición en condiciones de laboratorio a depredadores (larvas de libélula) disminuyó significativamente la actividad larvaria (Richter-Boix et al., 2007). Las larvas reducen su actividad frente a olores de conespecíficos sometidos a estrés, pero solo débilmente cuando se les compara con su respuesta frente a olores de conespecíficos heridos. Las larvas aprenden a reconocer nuevos depredadores a través de la asociación con olores de estrés o de alarma. Sin embargo, el periodo de retención de la asociación aprendida es más corto para olores de estrés que de alarma (Gonzalo et al., 2010)3. Las larvas de P. perezi son capaces de aprender a reconocer nuevos depredadores cuando sus olores se encuentran emparejados con olores conespecíficos de alarma. Sin embargo, esta asociación podría inducir respuestas antidepredatorias costosas frente a especies no nocivas. Experimentos llevados a cabo muestran que las larvas, cuando experimentan un patrón aleatorio de presencia de olores de alarma o de olores de depredadores 4 días antes o después de la detección simultánea de los dos olores emparejados, no desarrollan una asociación aprendida, lo que demuestra un efecto de irrelevancia aprendida sobre el aprendizaje. Además, las larvas inhiben la formación de una asociación entre olores de depredadores y olores de alarma después de 4 días de exposición a olores de depredadores, lo que demuestra la existencia de un efecto de inhibición latente sobre el aprendizaje de olores relacionados con el aumento del riesgo de depredación. Tanto la irrelevancia aprendida como la inhibición latente parecen ser estrategias para evitar aprender información irrelevante y producir respuestas antidepredatorias costosas a estímulos no depredadores (Gonzalo et al., 2013)3. Larvas de P. perezi procedentes de Doñana responden experimentalmente a los olores de larvas de libélula reduciendo su actividad y desarrollando cambios defensivos en la morfología de la cola, con mayor altura y pigmentación de ésta. En cambio estas respuestas no se activan en el caso de un depredador introducido, el cangrejo rojo americano. La comparación entre larvas de procedentes de charcas con y sin cangrejo rojo americano no reflejó cambios morfológicos ni de comportamiento frente al cangrejo (Gómez-Mestre y Díaz-Paniagua, 2011)3. Sin embargo otro estudio ha puesto de manifiesto que la introducción de un depredador exótico, el cangrejo rojo americano (Procambarus clarkii), está provocando la rápida evolución de defensas coomportamentales y morfológicas en P. perezi. La comparación entre larvas de poblaciones que llevan expuestas al cangrejo desde hace 30 años y 20 años con poblaciones sin coexistencia ha demostrado que las poblaciones que no han estado expuestas al cangrejo tienen plasticidad de comportamiento y muestran actividad reducida ante el cangrejo mientras que en poblaciones que coexisten desde hace tiempo con el cangrejo muestran siempre un comportamiento canalizado de escasa actividad. En una población con un largo periodo de coexistencia las larvas muestran una defensa morfológica, la posesión de una cola más alta (Nunes et al., 2014)3.
Depredadores Entre sus depredadores se encuentran anfibios (Pelobates cultripes, también canibalismo) (Díaz-Paniagua et al., 2007)1, reptiles (Natrix maura) (Pleguezuelos y Moreno, 1998; Santos y Llorente, 1998; Santos et al., 2000; datos propios inéditos), aves (Tyto alba, Bubulcus ibis) (Mateos y Lázaro, 1986; Rey et al., 1994), Ardea cinerea, Ciconia ciconia, Rallus acuaticus, Plegadis falcinellus, Milvus milvus, Milvus migrans, Falco naumanni, Elanius caeruleus, Gelochelidon niloticus, Athene noctua (Díaz-Paniagua et al., 2007)1, y mamíferos (Lutra lutra, Mustela vison, Herpestes ichneumon) (Delibes et al., 1984; Adrian y Delibes, 1987; Bueno-Tena, 1994; Clavero et al., 2005), Rattus norvegicus, Sus scrofa, Meles meles, Genetta genetta (Díaz-Paniagua et al., 2007)1,. Se ha descrito el ataque de una larva de libélula a un ejemplar juvenil de la especie (Torralba y Ortega, 1998), así como casos de canibalismo (Hódar et al., 1990). Asimismo, la especie Procambarus clarkii puede infligir severas heridas a individuos adultos de Pelophylax perezi (Bermejo, 2006). Sus larvas son depredadas por anfibios (Pleurodeles waltl) (Santos et al., 1986), reptiles (Natrix maura, Mauremys leprosa, Emys orbicularis) (Santos y Llorente, 1998; Santos et al., 2000; Gómez-Mestre y Keller, 2003; datos propios inéditos) y crustáceos (Cruz y Rebelo, 2005). Se ha citado un caso de depredación de un juvenil de P. perezi por un escorpión común (Buthus occitanus) (González de la Vega, 2007).1
Parásitos Ha sido descrita la presencia de parásitos en el intestino, pulmón, paquetes musculares y vejiga urinaria. En la Península Ibérica, entre las especies de helmintos parásitos de Pelophylax perezi se ha descrito el Cestodo Diplopylidium acanthotetra (Vojtkova y Roca, 1996), los Trematodos Gorgodera euzeti, Gorgoderina vitelliloba, Gorgodera microovata, Gorgodera granatensis, Diplodiscus subclavatus, Haplometra cylindraea, Opisthodiscus nigrivasis, Halipegus kessleri, Halipegus ovocaudatus, Dolichosacdus rastellus, Opisthioglyphe endoloba, Opisthioglyphe ranae, Haematoloechus variegatus, Skrjabinoeces similis, Cephalogonimus europaeus, Leptophallus nigrovenosus, Paralepoderma brumpti, Ratzia parva, Szidatia joyeuxi, Massaliatrema gyrinicola, Pleurogenes claviger, Pleurogenes hepaticota, Pleurogenoides medians, Pleurogenoides stromi, Pleurogenoides punicus, Sonsinotrema tacapense, Sonsinotrema calloti, Prosotocus fuelleborni, Prosotocus sigalasi (Roca et al., 1984; Lluch et al., 1985; Lluch et al., 1986a,b, c, d; Navarro y Lluch, 1991; Vojtkova y Roca, 1994) y los Nematodos: Seuratascaris numidica, Icosiella neglecta, Cosmocerca ornata, Cosmocerca commutata, Aplectoma macintosi, Amphibiocapillaria costacruzi, Strongyloides mascomai, Oswaldocruzia filiformis, Neyraplectana mauritanicus, Rabhdias bufonis (Navarro et al., 1988; Navarro et al., 1989; Vojtkova y Roca, 1996). Entre los protozoos que parasitan Pelophylax perezi se encuentran: Retortomonas dobelli, Chilomastix caulleryi, Monocercomonas maculatus, Tritrichomonas batrachorum, Tritrichomonas augusta, Tetratrichomonas prowazekii, Octomitus neglecta, Spironucleus elegans, Giardia agilis, Opalina ranarum, Opalina obtrigona, Cepedea dimidiata, Balantidium duodeni, Balantidium elongatum, Balantidium entozoon, Nyctotherus cordiformis y Trichodina ranae (Hassl y Hassl, 1988; Vojtkova y Roca, 1993). Estudios más recientes amplían el número de parásitos. Se han encontrado en poblaciones de Ávila las siguientes 42 especies de parásitos (2 bacterias sanguíneas, 29 especies de protozoos, 6 trematodos, 4 nematodos y una sanguijuela): Aegyptianella bacterifera, Aegyptianella ranarum, Retortamonas dobelli, Chilomastix caulleryi, Hexamita intestinalis, Spironucleus elegans, Brugerolleia algonquinensis, Octomitus neglectus, Giardia agilis, Monocercomonas maculatus, Trichomitus batrachorum, Tetratrichomonas prowazeki, Trypanosoma rotatorium, Trypanosoma loricatum, Trypanosoma sp.1., Trypanosoma sp. 2, Rhizomastix gracilis, Opalina ranarum, Opalina obtrigona, Cepedea dimidiata, Entamoeba ranarum, amoebas of free living, Eimeria prevoti, Lankesterella minima, Dactylosoma ranarum, Nyctotheroides cordiformis, Balantidium duodeni, Balantidium entozoon, Balantidium elongatum, Trichodina ranae, Blastocystis enterocola, Opisthodiscus nigrivasis, Haematoloechus variegatus, Cephalogonimus retusus, Gorgodera amplicava, Gorgoderina vitelliloba, Opisthioglyphe endoloba, Cosmocerca ornata, Rhabdias bufonis, Icosiella neglecta y Capillaria costacruzi. La sanguijuela Batracobdella algira era vector de Icosiella neglecta, Lankesterella minima y Trypanosoma sp. (Jiménez et al., 2001). Hernández Nevado et al. (1996) mencionan el trematodo Opisthodiscus nigrivasis en individuos de Cantabria. Navarro et al. (1995) han descrito el nematodo Dorylaimus parasiticus en individuos de Cáceres y Ávila. En Canarias se mencionan los siguientes protozoos: Retortamonas dobelli, Chilomastix caulleryi, Spironucleus elegans, Octomitus neglectus, Giardia agilis, Monocercomonas maculatus, Trichomitus batrachorum, Tetratrichomonas prowazeki, Tritichomonas augusta, Opalina ranarum, O. obtrigona, Cepedea dimidiata, Balantidium entozoon and Nyctotheroides cordiformis, Trichodina ranae y Balantidium duodeni (Carrera-Moro et al., 1987).
Referencias Adrian, J., Delibes, M. (1987). Food habits of the otter (Lutra lutra) in two habitats of the Doñana National Park, SW Spain. J. Zool., Lond., 212: 399-406. Arano, B., Llorente, G.A. (1995). Hybridogenetic processes involving Rana perezi: distribution of the P-RP system in Catalonia. Pp. 41-44. En: Llorente, G.A., Montori, A., Santos, X., Carretero, M.A. (Eds.). Scientia Herpetologica. Societas Europaea Herpetologica-Asociación Herpetológica Española. Madrid. Báez, M., Luis, R. (1994). Datos sobre el desarrollo larvario de Rana perezi (Seoane, 1885) (Anura, Ranidae) en Tenerife (Islas Canarias). Vieraea, 23: 155-164. Barrio, C. (1991). Intento de depredación por parte de Rana perezi sobre Passer domesticus. Bol. Asoc. Herpetol. Esp., 2: 16-17. Bermejo, A. (2006). Nuevos datos de agresiones de Procambarus clarkii sobre Pleurodeles waltl. Bol. Asoc. Herpetol. Esp., 17: 82-85. Bueno-Tena, F. (1994). Alimentación del visón americano (Mustela vison Schreber) en el río Voltoya (Ávila, Cuenca del Duero). Doñana, Acta Vertebrata, 21: 5-13. Carrera-Moro, M. P., Zapatero-Ramos, L. M., Castaño-Fernández, C. (1987a). Protozoos parásitos de anfibios anuros de las Islas Canarias. Revista Ibérica de Parasitología, 47 (2) : 113-119. Carrera-Moro, M. P., Zapatero-Ramos, L. M., González-Santiago, P. M. (1987b). Monocercomonas maculatus n. sp. (Protozoa: Trichomonadida) de anfibios anuros de las Islas Canarias. Revista Ibérica de Parasitología, 47 (1): 1-6. Clavero, M., Prenda, J., Delibes, M. (2005). Amphibian and reptile consumption by otters (Lutra lutra) in a coastal area in southern Iberian Peninsula . Herpetological Journal, 15 (2) : 125-131. Crochet, P.A., Dubois, A., Ohler, A., Tunner, H. (1995). Rana (Pelophylax) ridibunda Pallas, 1771, Rana (Pelophylax) perezi Seoane, 1885 and their associated klepton (Amphibia, Anura) : morphological diagnoses and description of a new taxon. Bull. Mus. Natl. Hist. Nat., 17: 11-30. Cruz, M.J., Rebelo, R. (2005). Vulnerabilitiy of Southwest Iberian amphibians to an introduced crayfish, Procambarus clarkii. Amphibia-Reptilia, 26: 293-303. Delibes, M., Aymerich, M., Cuesta, L. (1984). Feeding of the Egyptian mongoose or ichneumon in Spain . Acta Theriologica, 29: 205-218. Díaz-Paniagua, C. (1986). Reproductive period of amphibians in the Biological Reserve of Doñana ( SW Spain ). Pp. 429-432. En: Rocek, Z. (Ed.). Studies in Herpetology (Proceedings of the Third Ordinary General Meeting of the Societas Europaea Herpetologica). Charles University . Prague . Díaz-Paniagua, C. (1992). Variability in timing of larval season in an amphibian community in SW Spain . Ecography, 15: 267-272. Díaz-Paniagua, C., Portheault, A., Gómez Rodríguez, C. (2007). Depredadores de los anfibios adultos de Doñana: Análisis cualitativo. Pp. 148-157. En: Gosá, A., Egaña-Callejo, A., Rubio, X. (Eds.). Herpetologia iberiarraren egoera = Estado actual da Herpetologia Ibérica = Estado actual de la Herpetología Ibérica : Lehen Herpetologia Kongressua Euskal Herrian, IX Congresso Luso-Espanhol, XIII Congreso Español de Herpetología. Munibe. Suplemento, nº 25. 303 pp. Díaz-Paniagua, C., Rodríguez, C., Portheault, A., de Vries, W. (2005). Los anfibios de Doñana. Organismo Autónomo de Parques Nacionales, Madrid. Egea-Serrano, A., Oliva-Paterna, F. J., Torralva, M. (2005b). Fenología reproductiva de la comunidad de anfibios presente en el noroeste de la Región de Murcia (SE Península Ibérica). Zoologica Baetica, 16: 59-72. Egea-Serrano, A., Oliva-Paterna, F.J., Torralva, M. (2005c). Selección de hábitat reproductor por Rana perezi Seoane, 1885 en el NO de la Región de Murcia (SE Península Ibérica). Rev. Esp. Herpetol., 19: 113-125. Egea-Serrano, A., Oliva-Paterna, F.J., Torralva, M. (2006). Breeding habitat selection of Salamandra salamandra (Linnaeus, 1758) in the most arid zone of its European distribution range: application to conservation management. Hydrobiologia, 560: 363-371. Gómez-Mestre, I., Díaz-Paniagua, C. (2011). Invasive predatory crayfish do not trigger inducible defences in tadpoles. Proceedings of the Royal Society B-Biological Sciences, 278 (1723): 3364-3370. Gómez-Mestre, I., Keller, C. (2003). Experimental assessement of turtle predation on larval anurans. Copeia, 2003: 349-356. González de la Vega, J. P. (2007). Depredación de escorpión común (Buthus occitanus) sobre juvenil de rana común (Pelophylax perezi) en el Andévalo onubense (Huelva). Boletín de la Asociación Herpetológica Española, 18: 95-96. Gonzalo, A., López, P., Martín, J. (2010). Risk level of chemical cues determines retention of recognition of new predators in Iberian green frog tadpoles. Behavioral Ecology and Sociobiology, 64 (7): 1117-1123. Gonzalo, A., López, P., Martín, J. (2013). Adaptive Forgetting in Iberian Green Frog Tadpoles (Pelophylax perezi): Learned Irrelevance and Latent Inhibition May Avoid Predator Misidentification. Journal of Comparative Psychology, 127 (1): 56-62. Hassl, A., Hassl, D. (1988). Ein Coccidium im Blut von Rana perezi Seoane, 1885 (Sporozoa: Coccidida/Anura: Ranidae). Salamandra, 24 (1) : 75-76. Hernández Nevado, G. Reguera Feo, A., Rallo Gruss, A. (1996). Relaciones en el sistema Opisthodiscus nigrivasis (V. Mehely, 1929) Odening, 1959 (Trematoda, Paramphistomidae) - Rana perezi Seoane, 1885 (Amphibia, Ranidae) en humedales próximos a Reinosa (Cantabria, España). Boletín de la Real Sociedad Española de Historia Natural, Sección Biológica, 92 (1-4): 157-160. Hódar, J.A., Ruiz, I., Camacho, I. (1990). La alimentación de la rana común (Rana perezi, Seoane, 1885) en el sureste de la Península Ibérica. Miscelánea Zoológica, 14: 145-153. Hotz, H., Uzzell, T., Berger, L. (1994). Hemiclonal hybrid water frogs associated with the sexual host species Rana perezi. Zoologica Poloniae, 39: 243-266. Jiménez, M. S., Zapatero, L. M., Castaño, C. (2001). Parasites of Rana perezi Seoane, 1885 in Avila Province, Spain. Research and Reviews in Parasitology, 61 (3-4) : 73-78. Llorente, G.A., Arano, B. (1997). Rana perezi. Pp. 164-166. En: Pleguezuelos, J. M. (Ed.). Distribución y Biogeografía de los anfibios y reptiles de España y Portugal. Monografías de Herpetología, nº 3. Editorial Universidad de Granada y Asociación Herpetológica Española. Granada. Llorente, G.A., Montori, A., Carretero, M.A., Santos, X. (2002). Rana perezi. Pp. 126-128.En: Pleguezuelos, J.M., Márquez, R., Lizana, M. (Eds.). Atlas y Libro Rojo de los anfibios y reptiles de España. Dirección General de la Conservación de la Naturaleza-Asociación Herpetológica Española. Madrid. Lluch, J., Navarro, P., Roca, V. (1985). Presencia en España de Ratzia parva (Stossich, 1904) Poche, 1926 (Digenea, Opisthorchiidae) parásito de anfibios y reptiles. Miscellania Zoologica, 9: 25-29. Lluch, J., Roca, V., Navarro, P. (1986a). Contribución al conocimiento de la helmintofauna de los herpetos ibéricos. III. Digenea, Paramphistomidae, Hemiuridae, Gorgoderidae, Plagiorchiidae, Haematoloechidae y Cephalogonimidae de Rana perezi Seoane, 1985 (Amphibia: Ranidae). Rev. Ibér. Parasitol., 46: 387-392. Lluch, J., Roca, V., Navarro, P. (1986b). Helmintofauna de anfibios del Levante Ibérico. Trematodos de Rana perezi Seoane, 1885. Bol. Real Soc. Esp. Hist. Nat., 81: 43-49. Lluch, J., Roca, V., Navarro, P. (1986c). Helmintofauna de los herpetos ibéricos. VII. Metacercarias de Rana perezi Seoane, 1885 (Amphibia, Ranidae). Miscel.lània Zoològica, 10: 55-60. Lluch, J., Roca, V., Navarro, P. (1986d). Contribucion al conocimiento de la helmintofauna de los herpetos ibericos. 2. Digenea Lecithodendriidae de Rana perezi Seoane, 1885 (Amphibia: Ranidae). Revista Ibérica de Parasitología, 46 (3): 229-236. Malkmus, R. (2005). Die Herpetofauna eines mittelportugiesischen Karstgebietes. Zeitschrift für Feldherpetologie, 12: 211-236. Martín, J., Luque-Larena, J. J., López, P. (2005). Factors affecting escape behavior of Iberian green frogs (Rana perezi). Canadian Journal of Zoology, 83: 1189-1194. Martín, J., Luque-Larena, J. J., López, P. (2006). Collective detection in escape responses of temporary groups of Iberian green frogs. Behavioral Ecology, 17: 222-226. Martínez-Solano, I., García-París, M. (2004). Comportamientos defensivos de ranas y sapos: se enfrentan a depredadores acuáticos y terrestres. Quercus, 225: 32-35. Mateos, A., Lázaro, E. (1986). Contribución al estudio de la alimentación de la garcilla bueyera (Bubulcus ibis ibis L.) en Extremadura. Alytes (Mérida), 4: 49-68. Moore, R. D., Griffiths, R. A., Román, A. (2004). Distribution of the Mallorcan midwife toad (Alytes muletensis) in relation to landscape topography and introduced predators. Biological Conservation, 116: 327-332. Navarro, P., Guerrero, F., Pérez-Mellado, V., Lluch, J. (1995). Description of a new species: Dorylaimus parasiticus, a parasite of amphibians in the Iberian Peninsula (Nematoda: Dorylaimida). Journal of Zoology (London), 237 (2): 169-177. Navarro, P., Izquierdo, S., Pérez-Soler, P., Hornero, M. J., Lluch, J. (1988). Contribución al conocimiento de la helmintofauna de los herpetos ibéricos. 8. Nematoda Ascaridida Skrjabin et Schultz, 1940 de Rana spp. Revista Ibérica de Parasitología, 48 (2): 167-173. Navarro, P., Lluch, J. (1991). Sobre las asociaciones helmínticas establecidas entre los trematodos Lecithodendriidae levantinos. Rivista di Parassitologia, 8 (3): 259-267. Navarro, P., Lluch, J., Izquierdo, S. (1989). Strongyloides mascomai sp. n. (Strongyloididae) un nouveau nematode parasite de Rana perezi Seoane, 1885 (Amphibia: Ranidae) de l'est de l'Espagne. Annales de Parasitologie Humaine et Comparee, 64 (4): 315-318. Nunes, A. L., Orizaola, G., Laurila, A., Rebelo, R. (2014). Rapid evolution of constitutive and inducible defenses against an invasive predator. Ecology, 95 (6): 1520-1530. Pagano, A., Lodé, T., Crochet, P. A. (2001). New contact zone and assemblages among water frogs of Southern France. J. Zool. Syst. Evol. Research, 39: 63-67. Pleguezuelos, J. M., Moreno, M. (1989). Alimentación primaveral de Natrix maura (Linné, 1758) (Ophidia, Colubridae) en el SE. de la Península Ibérica. Rev. Esp. Herpetol., 3: 221-236. Rey, J. M., Esteban, M., Sanchíz, B. (1994). Registros corológicos de anfibios españoles fundamentados en egagrópilas de lechuza común. Bol. Asoc. Herpetol. Esp., 5: 4-8. Richter-Boix, A., Llorente, G.A., Montori, A. (2006b). Breeding phenology of an amphibian community in a Mediterranean area. Amphibia-Reptilia, 27: 544-549. Richter-Boix, A., Llorente, G.A., Montori, A. (2007a). A comparative study of predator-induced phenotype in tadpoles across a pond permanency gradient. Hydrobiologia, 583: 4356. Richter-Boix, A., Llorente, G.A., Montori, A. (2007b). Hierarchical competition in pond-breeding anuran larvae in a Mediterranean area. Amphibia-Reptilia, 28: 247-261. Roca, V., Lluch, J., Navarro, P. (1984). Sur la presence en Espagne de Sonsinotrema tacapense (Sonsino, 1894) Balozet et Callot, 1938 (Trematoda: Lecithodendriidae) parasite d'amphibiens et de reptiles. Vie et Milieu, 33 (3-4): 177-179. Román, A. (2002). Alytes muletensis. Pp. 79-81. En: Pleguezuelos, J. M., Márquez, R., Lizana, M. (Eds.). Atlas y Libro Rojo de los Anfibios y Reptiles de España. Dirección General de Conservación de la Naturaleza- Asociación Herpetológica Española. Madrid. Salvador, A., Carrascal, L. M. (1990). Reproductive phenology and temporal patterns of mate access in Mediterranean anurans. Journal of Herpetology, 24 (4): 438-441. Santos, F. J., Salvador, A., García, C. (1986). Dieta de las larvas de Pleurodeles waltl y Triturus marmoratus (Amphibia: Salamandridae) en simpatría en dos charcas temporales de León. Rev. Esp. Herpetol., 1: 293-313. Santos, X., González-Solís, J., Llorente, G.A. (2000). Variation in the diet of the viperine snake, Natrix maura, in relation to prey availability. Ecography, 23: 185-192. Santos, X., Llorente, G. A. (1998). Sexual and size-related differences in the diet of the snake Natrix maura from the Ebro Delta (Spain). Herpetological Journal, 8: 161-165. Torralba, A., Ortega, M. (1998). Libélula comedora de ranas. Bol. Soc. Entomol. Aragon., 21: 14. Vojtkova, L., Roca, V. (1993). Parasites of the frogs ans toads in Europe. Part I: Protozoa. Rev. Esp. Herpetol., 7: 37-45. Vojtkova, L., Roca, V. (1994). Parasites of the frogs and toads in Europe. Part II: Trematoda. Rev. Esp. Herpetol., 8: 7-18. Vojtkova, L., Roca, V. (1996).Parasites of the frogs and toads in Europe. Part III: Nematoda, Cestoda, Acanthocephala, Hirudinea, Crustacea and Insecta. Rev. Esp. Herpetol., 10: 13-27.
Andrés Egea-Serrano Revisiones: 9-01-2008 Otras contribuciones: 1. Alfredo Salvador. 27-03-2008; 2. Alfredo Salvador. 20-07-2009; 3. Alfredo Salvador. 26-09-2014 Egea-Serrano, A. (2014). Rana común – Rana perezi. En: Enciclopedia Virtual de los Vertebrados Españoles. Salvador, A., Martínez-Solano, I. (Eds.). Museo Nacional de Ciencias Naturales, Madrid. http://www.vertebradosibericos.org/
|
|
|
|
|
|
|
